多重熒光免疫組化(mIHC)的主要技術原理源自酪酰胺信號放大(TSA)技術。TSA是一種利用辣根過氧化酶(HRP)對靶蛋白或核酸進行高密度原位標記的酶學檢測方法。該技術利用酪胺Tyramide的過氧化物酶反應，在抗原-抗體結合部位產生大量的酶促產物。這些產物與周圍的蛋白殘基結合，進而與熒光基團結合，使得檢測信號得到幾何級放大。這種技術可與高性能染料如Alexa Fluor、傳統(tǒng)熒光染料等相兼容，實現(xiàn)多重熒光標記。

　　多重熒光免疫組化技術廣泛應用于多個領域：

　　單細胞分析：能夠在單個細胞水平上同時檢測多種蛋白質的表達。

　　芯片分析：在生物芯片上實現(xiàn)高通量的多重蛋白質檢測。

　　組織形態(tài)和功能分析：研究組織中不同蛋白質的空間分布和相互關系。

　　腫瘤微環(huán)境分析：全景式地分析腫瘤免疫浸潤、免疫檢查點、腫瘤細胞與免疫細胞的空間關系等。

　　自身免疫疾病分析：探究自身免疫疾病的發(fā)病機制和病程進展。

　　排異反應評估：監(jiān)測和評估后的免疫排異反應。

　　多重熒光免疫組化檢測的大致步驟如下：

　　取樣：獲取待檢測的組織樣本，通常采用切片方法。

　　固定處理：用甲醛或乙醇等物質對組織樣本進行固定，以保持其形態(tài)結構。

　　切片處理：將固定后的組織切成薄片，通常厚度為4-5微米。

　　抗體標記：選擇特定的抗體對目標蛋白質進行標記，這些抗體通常與熒光素或酶等物質結合。

　　TSA放大：利用TSA技術進行信號放大，使熒光素在抗原-抗體結合部位大量沉積。

　　染色處理：通過熒光染色方法將標記的抗體與特定的組織細胞結合。

　　圖像采集與分析：使用熒光顯微鏡或共聚焦顯微鏡采集圖像，并進行定量和定性分析。

　　多重熒光免疫組化的圖像分析方法包括：

　　定性分析：通過觀察熒光信號的分布和強度，判斷目標蛋白質在組織中的表達和定位。

　　定量分析：利用圖像處理軟件對熒光信號進行量化，比較不同樣本或不同條件下的蛋白質表達差異。

　　共定位分析：分析不同熒光信號之間的空間關系，探究蛋白質之間的相互作用和共定位情況。

　　通過這些分析方法，多重熒光免疫組化技術能夠提供豐富的生物學信息，有助于深入理解細胞的生理和病理過程。